S-Monovette ® — техника взятия крови, методы взятия крови, советы по работе

• Начало раздела
• Пробирки Пробирки для взятия крови
• Пробирки с реагентами
• Пробирки центрифужные
• Микропробирки с замком-защёлкой
• Штативы для моновет

Материалы предоставлены SarstedtAG & Co., перевод на русский язык 2015 г.

Автор материала: Профессор, доктор естественных наук Ральф Лихтингхаген (Prof. Dr. Ralf Lichtinghagen) , ФРГ 2014 г.

При использовании этого материала необходимо ссылаться на автора и правообладателя.

1.1. Стандартные условия взятия проб крови

— За 3 дня до взятия крови пациент должен избегать чрезмерных и экстремальных физических нагрузок.
— Накануне взятия крови пациент должен воздержаться от приема алкоголя ( 24-часовое воздержание от алкоголя).

— Между 7 и 9 часами утра взятие крови должно производиться натощак (т.е. воздержание от приема пищи от 12 до 14 часов, разрешается питье воды).

— В течение 10 минут до взятия крови пациент должен быть в состоянии покоя ( в положении сидя или лежа).

— Во время взятия крови недопустима «работа кулаком! Сжимание и разжимание кулака ведет к существенному повышению уровня кальция ( до 2 мм/л) в сыворотке/плазме.

— Наложение жгута должно быть не более, чем на 1 минуту (желательно не более 30 секунд).

— Следует соблюдать последовательность действий: пунктировать сосуд, ослабить жгут, взять пробу крови.

— Назначение или отмена медикаментов пациенту производится по согласованию с врачом.

Общие условия хранения биопроб до доставки в лабораторию

* Доставка ликвора для бактериологического исследования.

** Отсроченная загрузка флаконов в анализатор увеличивает время выполнения анализа.

Таблица 2

1.2. Стандартные условия взятия проб крови

— За 3 дня до взятия крови пациент должен избегать чрезмерных и экстремальных физических нагрузок.

— Накануне взятия крови пациент должен воздержаться от приема алкоголя ( 24-часовое воздержание от алкоголя).

— Между 7 и 9 часами утра взятие крови должно производиться натощак (т.е. воздержание от приема пищи от 12 до 14 часов, разрешается питье воды).

— В течение 10 минут до взятия крови пациент должен быть в состоянии покоя ( в положении сидя или лежа).

— Во время взятия крови недопустима «работа кулаком! Сжимание и разжимание кулака ведет к существенному повышению уровня кальция ( до 2 мм/л) в сыворотке/плазме.

— Наложение жгута должно быть не более, чем на 1 минуту (желательно не более 30 секунд).

— Следует соблюдать последовательность действий: пунктировать сосуд, ослабить жгут, взять пробу крови.

— Назначение или отмена медикаментов пациенту производится по согласованию с врачом.

Как сдать материал на бактериологическое исследование Бактериологическая лаборатория -пациентам: как сдать материал на бактериологическое исследование

Общие требования к сбору и транспортировке проб биологического материала для бактериологического исследования:

• Пробы необходимо собирать до начала антибактериальной терапии, при отсутствии такой возможности – посредственно перед повторным приемом (введением) препарата.
• Пробы необходимо собирать с минимальным загрязнением материала нормальной микрофлорой, т.к. её наличие приводит к ошибочной трактовке результата
• Пробы необходимо собирать в стерильную одноразовую посуду, предназначенную для бактериологических исследований. Недопустимо мыть стерильный контейнер перед использованием!
• При сборе и транспортировке пробы не загрязнять наружную поверхность посуды и сопроводительные документы (направления)
• Собранные пробы доставляют в лабораторию не позднее 2-х часов с момента сбора, в случае использования транспортной системы (стерильная пробирка с транспортной средой и тампоном, стерильно упакованным вместе с пробиркой) – в течение 48-72 часов.

ВНИМАНИЕ!

Несоблюдение правил может привести к необходимости повторной сдачи анализа или неправильной трактовке результата

Посуда, используемая для транспортировки проб в бактериологическую лабораторию

Направление в бактериологическую лабораторию ГКБ №15 им. О.М.Филатова на бактериологическое исследование (бак. посев) Копия страхового полиса

Посуда, используемая для транспортировки проб в бактериологическую лабораторию

Правила сбора биологических материалов, собираемых пациентами самостоятельно

МОЧА

• Перед сбором пробы необходимо тщательно промыть наружные половые органы и область заднего прохода теплой водой с мылом.
• Не допускается использование дезинфектантов для проведения обработки.
• Не допускается собирать мочу с постельного белья, из мочеприемника или судна.
• Для анализа следует собирать среднюю порцию утренней мочи. Начать мочеиспускание в унитаз, среднюю порцию собрать в стерильный одноразовый контейнер в количестве 10-20 мл, закончить мочеиспускание в унитаз.
• Пробу необходимо доставить в лабораторию не позднее 2 часов с момента сбора.

ФЕКАЛИИ

• Собирать фекалии для исследования следует утром.
• Дефекацию производят в сухую чистую, предварительно продезинфицированную ёмкость. Важно тщательно удалить дезинфектанты с поверхности емкости, ополоснуть кипятком и охладить до комнатной температуры.
• Перенести пробу кала 3-4 ложечки (1,5-2,0 г) в стерильный одноразовый контейнер при помощи вмонтированного в его крышку стерильного шпателя-ложечки. При наличии в испражнении патологических примесей – гной, слизь, кровь, хлопья – их необходимо включить в отбираемую пробу. — Если фекалии жидкие, контейнер заполняют не более чем на 1/3 объема.
• У реанимационных больных, маленьких детей допускается собирать материал со стерильной сухой пеленки, не касаясь ткани.
• Не допускать попадания в пробу кала мочи или воды.
• Пробу доставляют в лабораторию не позднее 2-х часов с момента сбора. В случае крайней необходимости (невозможности получить утреннюю пробу), допустимо оставить материал, полученный накануне во время вечерней дефекации, в холодильнике, и доставить его в лабораторию утром.
• Внимание! При назначении анализа кала на определение антигена токсинов Clostridium difficile исследованию подлежит только жидкий стул.

МОКРОТА

• Перед сбором мокроты пациент должен почистить зубы и прополоскать рот и горло теплой кипяченой водой.
• Важно, чтобы в контейнер не попало содержимое носоглотки или слюни.
• Пробу мокроты, полученную в результате глубокого кашля, собирают в стерильный одноразовый контейнер с завинчивающейся крышкой.
• Пробу доставляют в лабораторию не позднее 2-х часов с момента сбора.

ГРУДНОЕ МОЛОКО

• При сцеживании молока женщина моет руки с мылом и тщательно обрабатывает соски и околососковую область отдельными смоченными 700 спиртом ватными тампонами.
• Молоко из правой и левой молочных желез исследуется отдельно.
• Первые 5-10 мл молока выливаются, последующие 3-4 мл сцеживаются в стерильный одноразовый контейнер.
• Пробы доставляют в лабораторию в сроки не более 3 часов до момента исследования.
• Молоко, сцеженное накануне, исследованию не подлежит.

Стерильные одноразовые контейнеры для бактериологических исследований приобретаются самостоятельно в аптеках.

В бактериологической лаборатории проводится бактериологическое исследование других биологических материалов, которые забирает специалист в медицинских учреждениях.

Время приема биологического материала на бактериологическое исследование:

понедельник-пятница 8.30-10.00 Тел.

Главный корпус больницы, центральный вход, справа от справочной

При сдаче материала на исследование необходимо при себе иметь документы:

1. Направление в бактериологическую лабораторию ГКБ №15 им. О.М.Филатова на бактериологическое исследование (бак. посев)
2. Копия страхового полиса

1.3. Получение исследуемого материала: 12 шагов

1.4. Наложение жгута и выбор места пункции

Продезинфицируйте место пункции согласно действующему порядку гигиены

Наложите жгут на ширину ладони выше места пункции

Пульс должен прощупываться (давление жгута 50-100 мм рт ст) Максимальная продолжительность наложения жгута- 1 минута

Сравнение результатов при увеличении времени наложения жгута от 2 до 6 минут

Места пункций

1. Vena basilica
2. Vena mediana cubiti (имеется в виду более глубоко расположенная вена, которая не просвечивается голубым цветом и просматривается только как выбухание)
3. Vena cephalica (проходит со стороны большого пальца кисти)
4. Vena cephalica
5. Vena basilica
6. Rete venosum dorsale manus

Время наложения жгута

Время наложения жгута более 1 минуты может вызвать изменение концентрации веществ и результатов измерений.

Для высокомолекулярных веществ (например, общий белок), а также для связанного с белком кальция могут быть получены искаженно высокие результаты измерений (особенно это касается измеряемых величин с относительно узкими референсными интервалами).

Показатели калия могут снижаться при увеличении времени наложения жгута.

1.5. Проблемы до и во время взятия крови

Плохое состояние вен

— Выберете другое место пункции.

— Наложите термосалфетку или теплую ткань.

— Используйте безопасный комплект Multifly.

— Примените взятие крови по аспирационному методу.

«Работа кулаком», вызывающая увеличение тока крови, из-за мышечной активности ведет к повышению уровня К и Mg.

— Слишком продолжительное сжатие вены ведет к изменению ряда параметров, например, К,ГГТ.

— «Изгибание» безопасной иглы при использовании S-Monovette не требуется, так как стандартный прокол выполняется под очень малым углом. Изменение просвета в результате изгибания иглы может привести к повреждению клеток (гемолиз).

— Слишком тонкая игла также может вызвать гемолиз.

Срез иглы прилегает к стенке вены

Решение: Слегка отведите иглу назад до восстановления кровотока

Игла проколола вену

Решение: Слегка отведите вену назад до восстановления кровотока.

Спались стенки вены

Решение: Подождите, пока вена не вернется в исходное состояние, а затем осторожно произведите взятие крови.

1.6. Аспирационная техника и вакуумная техника

1.6.1. S-Monovette – аспирационная техника

Внимание! — Только непосредственно перед пункцией вены следует зафиксировать иглу S-Monovette легким поворотом по часовой стрелке.

— Большим пальцем свободной руки натяните кожу и зафиксируйте вену. Предупредите пациента о начале процедуры и введите иглу в вену. Как только вена будет пунктирована, в S-Monovette поступит первая капля крови, что свидетельствует о попадании в вену.

— Ослабьте жгут и медленно оттяните поршень. Подождите, пока кровь не перестанет поступать в пробирку.

— При взятии нескольких проб следует отсоединить первую пробирку S-Monovette от иглы легким поворотом против часовой стрелки. При этом игла остается в вене.

После взятия крови

— Сначала отсоедините S-Monovette, а затем извлеките иглу из вены.

Внимание! После завершения процедуры взятия крови (это касается всех устройств S-Monovette) оттяните шток поршня до характерного щелчка и отломите рукоятку.

1.6.2. S-Monovette – вакуумная техника

— Перед взятием крови безопасная игла уже должна находиться в вене.

— Мы настоятельно рекомендуем использовать первую пробирку S-Monovette с помощью аспирационной техники, чтобы можно было начинать взятие крови в щадящем режиме. Затем можно переходить к вакуумной технике.

— Непосредственно перед взятием крови следует оттянуть поршень до дна пробирки S-Monovette до характерного щелчка. Отломить рукоятку (раздается хруст).

— Подсоедините пробирку S-Monovette с созданным вакуумом к игле и зафиксируйте ее путем вращением по часовой стрелке.

— Подождите пока кровь не перестанет поступать в пробирку, затем отсоедините S-Monovette от безопасной иглы, потом извлеките безопасную иглу из вены.

Аспирационная техника

Вакуумная техника

Техника взятия и посева крови на гемокультуру и стерильность

Цель: определить вид возбуди геля инфекционного заболевания и его чувствительность к антибиотикам.

Оснащение: Шприц для однократного применения, лоток стерильный с тампонами и пинцетом, жгут резиновый, салфетка (подложить под жгут), 70% этиловый спирт, спецодежда (стерильный халат, маска, перчатки), чистые пробирки в штативе.

Дополнительное оснащение: — стерильные флаконы со средами (в 1-ю неделю заболевания получить флакон со 100 мл; во 2-ю неделю 150 мл; 3-я педеля -200мл) полученными в бактериологической лаборатории к моменту забора крови;

— спички, спиртовка.

Техника забора крови на серологическое и биохимическое исследование

Цель: лабораторная диагностика инфекционных болезней.

Оснащение: шприц для одноразового применения лоток стерильный с ватными тампонами и пинцетом, жгут резиновый, салфетка (подложить под жгут), 70% этиловый спирт, спецодежда (медицинский халат, маска, перчатки).

Чистые пробирки в штативе.

Техника постановки и учет кожно-аллергологической пробы

Цель: определение повышенной чувствительности макроорганизма к возбудителю и его токсинам, для диагностики бруцеллеза, туляремии, токсоплазмоза, брюшного тифа, орнитоза, дизентерии, Ку-лихорадки и др.

Оснащение: туберкулиновый шприц с иглой, 70% этиловый спирт, аллерген (бруцеллин, тулярин).

1.7. Взятие проб крови из катетеров

Следует избегать взятия крови из катетеров ввиду возможного искажения данных измерения. Возможными рисками здесь являются гемолиз и бактериальное загрязнение из-за инфузий. В тех случаях, когда взятие крови из катетера неизбежно, необходимо учитывать следующее:

— Во избежание эффектов разбавления или бактериального загрязнения между последней инфузией и взятием крови должно пройти не менее 15 минут. Выбор времени зависит от инфузии и должен соответствовать правилам внутреннего распорядка лечебного учреждения.

— Если катетер промывался гепаринсодержащим раствором, то перед взятием крови для анализов на свертываемость его следует промыть раствором хлористого натрия.

— Перед взятием пробы крови 5-10 мл крови следует слить в отдельную пробирку и не использовать. Во избежание путаницы эту пробирку следует соответствующим образом промаркировать.

Принципиально можно упростить затруднения при интерпретации сомнительных результатов анализов, если сообщить в лабораторию о том, что данная проба была взята из катетера. Для контроля медикаментозного лечения следует особо обращать внимание на риск бактериального загрязнения. Попадание остатков медикаментов может приводить к слишком большим искажениям результатов измерения.

Фактор риска гемолиза : катетеры

При взятии крови из катетеров не рекомендуется использовать вакуумную технику из-за высокой скорости тока крови, из-за чего возникает высокий риск гемолиза.

С помощью аспирационной техники возможно щадящее, медленное заполнение S-Monovette. Благодаря этому риск гемолиза существенно уменьшается.

Переходник Multi-Adapter: прямое соединение

S-Monovette можно напрямую соединить с катетером с помощью переходника Multi-Adapter.

Можно предотвратить использование одноразовых шприцев и, соответственно, риск появления гемолиза и перекрестного бактериального загрязнения.

— Для соединения S-Monovette с переходниками типа Луер используйте, например, in vitro катетор или трехходовой кран.

Правила забора и посева крови на стерильность и гемокультуру

Промыть желудок больному ПТИ

При первых признаках пищевой токсикоинфекции (тошноте, рвоте, болях в животе, тенезмах, поносе) больному необходимо промыть желудок, попросив его выпить жидкость или введя ее в желудок через зонд. Процедуру можно повторить и в более поздние сроки при продолжающихся тошноте и рвоте. С этой целью используют 2%‑ный раствор гидрокарбоната натрия, слабый раствор марганцовокислого калия или обыкновенную кипяченую воду. Промывание осуществляют до тех пор, пока промывные воды не станут чистыми, без комочков непереваренной пищи и слизи. Частые рвота и жидкий стул приводят к обезвоживанию организма, поэтому больному в зависимости от тяжести его состояния назначается регидратационное лечение пищевой токсикоинфекции у детей с использованием регидрона, квартасоли, трисоли перорально. Инфузионная регидратационная терапия показана в более тяжелых случаях, при токсикозе с эксикозом, и в этом случае назначаются 5%‑ный раствор глюкозы, солевые растворы, раствор Рингера–Локка. Дезинтоксикационная терапия включает назначение гемодеза, полиглюкина, реополиглюкина, улучшающих кровообращение и снимающих симптомы интоксикации. Также назначаются жаропонижающие и противосудорожные средства, глюкокортикоиды. При сильном болевом синдроме назначаются спазмолитики.

особенности питания инфек.больных

Основные правила лечебного питания инфекционного больного

Основоположник отечественной диетологии М. И. Певзнер, разработал диету № 13 для инфекционных больных, и рекомендовал выполнять следующие правила при составлении рациона инфекционному больному:

Нельзя допускать, чтобы лихорадящий больной голодал. Он должен получать достаточное количество пищи, но маленькими порциями за один раз.

Всякое перекармливание противопоказано, даже если у больного есть аппетит.

По возможности следует исключать из рациона пищу, механически сильно раздражающую органы пищеварения.

Необходимо следить за функцией выделительных органов и при запорах включать в пищевой рацион продукты, действующие послабляющим образом (сахар, мед, соки сырых овощей, фруктов и ягод), а при поносах исключать молоко в чистом виде, холодные напитки и ограничить количество сахара.

При почечных симптомах необходимо исключать из рациона крепкие бульоны, экстрактивные вещества, пряности.

Необходимо учитывать состояние нервной системы больного, допуская введение в пищевой рацион только незначительного количества питательных веществ, раздражающих нервную систему (крепкий кофе, чай, очень крепкий бульон), или даже полностью их исключая.

При острых инфекциях значительно возрастает потребность организма в витаминах. Особую ценность представляют витамины, которые тем или иным образом влияют на состояние иммунитета. Наиболее богаты витамином С шиповник, черная смородина, цитрусовые, облепиха. Пищевые источники витамина А: печень, икра зернистая белужья, желток яйца, масло сливочное, твердые сыры. Витамин В2 (рибофлавин) в большом количестве содержится в субпродуктах, дрожжах, миндале, сырах, яйцах, твороге. Витамин В6 (пиридоксин) содержится в субпродуктах, мясе, фасоли, сое, рисе, пшене, картофеле. D улучшает состояние противотуберкулезного и противогрибкового иммунитета. Пищевые источники витамина D: жир из печени рыб и морских животных, лосось, сельдь, скумбрия, икра, тунец, яйцо, сливки, сметана.

Среди микроэлементов важнейшим для состояния иммунной системы является цинк, дефицит которого развивается при энтеритах, особенно у пациентов, злоупотребляющих алкоголем. Пищевые источники цинка: моллюски, грибы, яичный желток, печень, мясо. В бобовых, кунжуте, арахисе также много цинка, но он связан с фитиновой кислотой. Суточная потребность в цинке – 15–25 мг.

Этапы диетотерапии при инфекционном заболевании

На фоне высокой лихорадки вполне допустимо только питье утоляющих жажду напитков в течение 1–2 дней, не следует насильно заставлять больного принимать пищу. Если лихорадка продолжается более 5–7 дней, то необходимо назначитьэнтеральное или парентеральное питание.

При улучшении состояния больного после падения температуры тела часто отмечается повышение аппетита. Однако, не надо стремиться с самого начала его полностью удовлетворить, так как в первые 3–4 дня некоторое время отмечаются температурные колебания, нарушена выработка ферментов желудочно-кишечного тракта. Вот почему в эти 3–4 дня не следует резко расширять применяемую диету.

При дальнейшем расширении рациона наибольшее внимание должно быть уделено восполнению белковой и витаминной недостаточности. Применяется либо диета № 11 либо диета № 15. Количество белка в рационе должно составлять 1,5 г/кг идеальной массы тела, в то время как квота жиров и углеводов соответствует нормам рационального питания. Реконвалесцентам назначают диету с ограничением продуктов, возбуждающих центральную нервную систему (крепкий кофе, чай, крепкие бульоны, специи, шоколад) и продуктов, содержащих грубую клетчатку и эфирные масла (брюква, репа, чеснок, редис, редька). Не показаны торты, пирожные, изделия из песочного теста. Разрешают все виды кулинарной обработки: варка, тушение, запекание и жаренье без панировки. Режим питания 3–4-разовый.

Иногда у реконвалесцентов на фоне быстрого расширения диеты могут возникнуть диспепсические явления. В этом случае необходимо назначить разгрузочный день (вареные овощи без соли и масла, печеные яблоки) и проверить, правильно ли составлен пищевой рацион, учтено ли наличие у больного сопутствующих хронических заболеваний органов пищеварения, и при необходимости внести соответствующие коррективы.

Забор крови на брюшной тиф

Техника забора крови на посев

. При строгом соблюдении стерильности набрать из локтевой вены в шприц «Рекорд» или Люэра 5—10 см3 крови, снять пинцетом иглу, обжечь канюлю шприца на спиртовом пламени и затем влить кровь в колбу со средой; горлышко колбы и пробку перед тем, как закрыть, обжечь. В качестве питательной среды употребляется или бульон, или желчь (50—100 см3 среды).
Техника забора крови на агглютинацию (реакцию Видаля).
Из мякоти пальца насосать 1,5—2 см3 крови в стерильную пастеровскую пипетку и по наполнении запаять или же набрать шприцем из локтевой вены 3—5 см3 крови, которую затем вылить в стерильную пробирку. Взятую кровь хранить в прохладном месте. При необходимости можно воспользоваться фильтровальной бумагой, для чего на бумажку размером в 5×10 см собрать 2—3 падающие капли крови, высушить на воздухе и в запечатанном конверте отослать для исследования в лабораторию.
Техника забора испражнений
. Посуда для сбора (судна, баночки и т. п.) не должна подвергаться химической обработке, а только кипячению. Для лучшего сохранения жизнеспособности микробов рекомендуется смешивать испражнения с равным объемом консерванта (30% раствор глицерина в физиологическом растворе).



Производится при тифо-паратифозных заболеваниях, сепсисе, менингококковой инфекции или других инфекциях, сопровождающихся лихорадкой, причем на протяжении всего лихорадочного периода болезни, но лучше в начальном периоде или в разгаре болезни (при выраженной бактериемии). Для исследования берут кровь из вены локтевого сгиба, у маленьких детей кровь берут в меньшем количестве из мочки уха, пятки, пальца. Пробы крови отбирают после тщательной обработки кожи с соблюдением правил асептики, одноразовым стерильным шприцем. Посев на питательные среды стерильного материала (кровь или другие, содержащие микробов жидкости у здоровых лиц) также лучше делать у постели больного, либо помещать в стерильную посуду, содержащую вещества, препятствующие свертыванию крови 0,3% раствора цитрата натрия, 0,1% раствор оксалата натрия). Обычно берут 5-10мл крови и засевают во флакон, содержащий 50-100 мл среды. Для этого используют для флакона с питательной средой (один для аэробов, другой для анаэробов). Посев крови производится на жидкие питательные среды – 10% желчный бульон, 1% сахарный бульон, двухфазную среду, а также жидкие и полужидкие среды для культивирования анаэробов в разведении 1:10. Флаконы с питательной средой получают в лаборатории, переливание крови из шприца во флакон необходимо производить над пламенем спиртовки, предварительно сняв иглу. Флакон с посевом направляется в лабораторию, а в вечернее и ночное время помещают в термостат. Студенту важно помнить, что тем раньше от начала заболевания производится посев. Тем больше шансов получить положительный результат. И, наоборот, чем позже взята кровь, тем меньшее количество возбудителя в ней находится и положительные результаты получаются реже. А при нормальной температуре – совсем редко. Следует знать, что для повышения числа положительных результатов гемокультуры рекомендуется, при отсутствии противопоказаний, за 15-20 минут для взятия крови ввести подкожно 1мл 0,1% раствора адреналина, что способствует сокращению селезенки и выходу в кровяное русло возбудителей (например, при тифозно-паратифозных заболеваниях) Предварительный результат посева при тифо-паратифозных заболеваниях получают через 2-3 дня, а окончательный – через 7-10 дней. Следует помнить, что увеличение кратности посевов крови (три дня подряд на подъеме температуры) значительно повышают частоту выделения микробов из крови. У леченных больных кровь для посева следует брать 5-6 раз.

Люмбальную пункцию

проводит врач.

Медицинская сестра осуществляет: — подготовку инструментов; — подготовку больного; — помощь врачу при проведении манипуляции; — обеспечение правильного ухода за больным после проведения пункции.

Цель проведения люмбальной пункции – лечебная и диагностическая.

Оснащение. Стерильные ватные шарики, пинцет, 3% спиртовой раствор йода (йодинола), шприц 2,0 мл или 5,0 мл, две иглы, 0,5% раствор новокаина, игла для спинномозговой пункции с мандреном, стерильные пробирки, спирт, стерильные салфетки, лейкопластырь, стерильные резиновые перчатки, бланки направлений в клиническую и бактериологическую лабораторию.

1. Больного поместить в положение сидя, нагнувшись вперед, или лежа на боку с приведенными к животу коленями.

2. Обеззаразить руки, одеть стерильные резиновые перчатки.

3. Место пункции (точка между четвертым и пятым поясничными позвонками) и близлежащую площадь обработать спиртовым раствором йода (йодинолом).

4. Провести анестезию кожи новокаином.

5. Провести люмбальную пункцию: иглу с мандреном ввести в точку между остистыми отростками четвертого и пятого поясничных позвонков.

6. Снять мандрен (из иглы струйно или капельно должна вытекать жидкость) и подставить стерильную пробирку. Собрать необходимое количество жидкости на исследование.

7. Вставить в иглу мандрен и осторожно извлечь иглу.

8. Обработать место прокола и наложить стерильную повязку.

Примечание: — транспортировка больного в палату осуществляется в горизонтальном положении, лежа на животе, на каталке; — первые 2-3 часа больной должен лежать на животе без подушки; — строгий постельный режим обязателен в течение суток.

1.8. Взятие проб крови для исследования гемокультур

В обиходе сепсис известен как заражение крови. Менее известен тот факт, что смертность (летальность) вследствие сепсиса составляет около 50%.

Характерные симптомы:

— апатия/слабость,

— высокая температура, сотрясающий озноб,

— спутанность сознания, тяжелое и частое дыхание,

— частый пульс, низкое артериальное давление,

— похолодание рук и ног из-за плохого кровообращения (централизация кровообращения)

Сепсис представляет собой экстренный случай, который требует срочнейшего установления диагноза и безотлагательного лечения: международные рекомендации и лечебные директивы Германии требуют организации приема антибиотиков в течение одного часа. До введения антибиотиков следует произвести взятие не менее двух гемокультур.

Взятие крови рекомендуется в момент приступа лихорадки. В качестве места пункции для взятия крови рекомендуется одна из периферических вен.

Не подходит для взятия крови организованный доступ к вене (например, центральный венозный катетер).

На достоверность показаний в большей мере влияют предотвращение бактериального загрязнения, продолжительность доставки и условия хранения образца и передача клинической информации.

В лабораторию требуется сообщать следующую информацию

— название отделения,

— дата взятия крови,

— данные пациента,

— предположительный диагноз,

— при необходимости, сведения о проводимой терапии антибиотиками.

1.8.1. Гигиенические требования

Ложноположительные гемокультуры, как правило, объясняются недостаточным соблюдением правил гигиены, что приводит к более продолжительному пребыванию в лечебном учреждении, к ненужной антимикробной терапии, к проведению дополнительной диагностики и к значительным дополнительным расходам.

Взятие крови с использованием флаконов для гемокультуры следует выполнять с учетом гигиенических требований.

Для предупреждения бактериальных загрязнений требуется следующие шаги:

1. Гигиеническая дезинфекция рук.
2. Использование перчаток.
3. Дезинфекция места пункции (например, с помощью 70% изопропанола или средства для дезинфекции кожи).
   а) нанесение дезинфицирующего средства и его распределение путем протирания;
4. б) повторное нанесение дезинфицирующего средства и просушивание в течение 60 секунд.

Внимание! После дезинфекции кожи не пальпировать вторично место пункции.

5. Дезинфекция флаконов для гемокультур:
   а) снятие защитных колпачков;
6. б) дезинфекция резиновой перегородки.

1.8.2. Порядок взятия крови

1. Выполните вышеуказанные гигиенические действия.

Соедините переходник флакона для гемокультуры с держателем безопасной иглы Multifly.

Пунктируйте вену и зафиксируйте иглу.

2. Соедините флакон для гемокультуры строго в вертикальном положении с держателем.

Не допускайте контакта между питательной средой флакона для гемокультуры с затвором флакона.

Благодаря присутствующему вакууму во флаконе он заполняется автоматически.

Внимание! Следите за объемом наполнения.

3. Если предполагается проводить новые взятия крови с помощью S-Monovette , то удалите переходник для гемокультуры из держателя безопасной иглы Multifly.

4. В дальнейшем вы можете проводить взятие крови привычным методом с помощью безопасной иглы Multifly.

Внимание!

— Необходимо обязательно учитывать рекомендацию изготовителя флаконов для гемокультур.

— После взятия крови следует тщательно перемешать содержимое.

— Флаконы не аэрировать, это не требуется.

— Флаконы с посеянными культурами как можно быстрее отправить при комнатной температуре в лабораторию.

Общие условия хранения биопроб до доставки в лабораторию

* Доставка ликвора для бактериологического исследования.

** Отсроченная загрузка флаконов в анализатор увеличивает время выполнения анализа.